Санітарне дослідження повітря. Санітарно-бактеріологічне дослідження повітря

46

Седиментаційний — найбільш старий метод, широко поширений завдяки простоті і доступності, проте є неточним. Метод запропонований р. Кохом і полягає в здатності мікроорганізмів під дією сили тяжіння і під впливом руху повітря (разом з частинками пилу і крапельками аерозолю) осідати на поверхню живильного середовища у відкриті чашки петрі. Чашки встановлюються в точках відбору на горизонтальній поверхні. При визначенні загальної мікробної обсіменіння чашки з мясопептонним агаром залишають відкритими на 5-10 хв або довше в залежності від ступеня передбачуваного бактеріального забруднення. Для виявлення санітарно-показових мікробів застосовують середовище гарро або туржецького (для виявлення стрептококів), молочно-сольовий або желточно-сольовий агар (для визначення стафілококів), суслоагар або середу сабуро (для виявлення дріжджів і грибів). При визначенні санітарно-показових мікроорганізмів чашки залишають відкритими протягом 40-60 хв.

Після закінчення експозиції всі чашки закривають, поміщають в термостат на добу для культивування при температурі, оптимальній для розвитку виділяється мікроорганізму, потім (якщо цього вимагають дослідження) на 48 год залишають при кімнатній температурі для утворення пігменту пигментообразующими мікроорганізмами.

Седиментаційний метод має ряд недоліків: на поверхню середовища осідають тільки грубодисперсні фракції аерозолю; нерідко колонії утворюються не з одиничної клітини, а зі скупчення мікробів; на застосовуваних поживних середовищах виростає тільки частина повітряної мікрофлори. До того ж цей метод абсолютно непридатний при дослідженні бактеріальної забрудненості атмосферного повітря.

Більш досконалими методами являютсяаспіраціонние , засновані на примусовому осадженні мікроорганізмів з повітря на поверхню щільної живильного середовища або в уловлюючу рідину (м’ясо-пептонний бульйон, буферний розчин, ізотонічний розчин хлориду натрію і ін.). У практиці санітарної служби при аспіраційному взятті проб використовуються апарат кротова, бактеріоуловітель речменского, прилад для відбору проб повітря (пов-1), пробовідбірник аерозольний бактеріологічний (паб-1),бактеріально-вірусний електропреципітатор (бвеп-1), прилад кіктенко, прилади андерсена, дьяконова, мб і ін.для дослідження атмосфери можуть бути використані і мембранні фільтри № 4, через які повітря просмоктується за допомогою апарату зейтца. Велика різноманітність приладів свідчить про відсутність універсального апарату і про більшу чи меншу ступінь їх недосконалості.

Прилад кротова. в даний час цей прилад широко застосовується при дослідженні повітря закритих приміщень і є в лабораторіях

Принцип роботи апарату кротова (рис. 22) заснований на тому, що повітря, що просмоктується через клиноподібну щілину в кришці апарату, вдаряється об поверхню живильного середовища, при цьому частинки пилу і аерозолю прилипають до середовища, а разом з ними і мікроорганізми, що знаходяться в повітрі. Чашку петрі з тонким шаром середовища зміцнюють на обертовому столику апарату, що забезпечує рівномірний розподіл бактерій на її поверхні. Працює апарат від електромережі. Після відбору проби з певною експозицією чашку виймають, закривають кришкою і поміщають на 48 год в термостат. Зазвичай відбір проб проводять зі швидкістю 20-25 л/хв протягом 5 хв.таким чином, визначається флора в 100-125 л повітря. При виявленні санітарно-показових мікроорганізмів обсяг досліджуваного повітря збільшують до 250 л.

Приймач перед забором проби повітря заповнюється 3-5 мл уловлює рідини (водою, м’ясопептонним бульйоном, ізотонічним розчином хлориду натрію).

Прилад речменського працює за принципом пульверизатора: при проходженні повітря через вузький отвір воронки рідина з приймача через капіляр у вигляді крапельок піднімається в циліндр. Краплі рідини ще більше дробляться, вдаряючись об скляну лопаточку і стінки судини, створюючи хмарка з дрібних крапельок, на яких і адсорбуються знаходяться в повітрі мікроорганізми. Насичені бактеріями краплі рідини стікають в приймач, а потім знову диспергуються, що забезпечує максимальне уловлювання бактерій з повітря. При роботі прилад поміщають під кутом 15-25°, що забезпечує стікання уловлює рідини в приймач. Швидкість відбору проб повітря через апарат річменського — 10-20 л/хв. Після закінчення роботи рідина з приймача забирають стерильною піпеткою і засівають (по 0,2 мл) на поверхню щільних поживних середовищ. Перевагою бактеріоуловлювача річменського є висока ефективність уловлювання бактеріальних аерозолів. Недоліки приладу полягають в труднощі його виготовлення, нестандартності одержуваних апаратів, їх великий крихкості і порівняно низької продуктивності.

Великою перевагою є серійний випуск цього приладу (що дало можливість оснастити ним лабораторії), його портативність, більш висока продуктивність (20-25 л/хв). Колба приладу, в яку поміщається вловлює рідина, виготовляється з термостійкого плексигласу, капіляр з нержавіючої сталі. У колбу вмонтований пульверизатор, що викликає диспергування уловлює рідини при просмоктуванні повітря. Такий пристрій дає можливість легко очищати і стерилізувати колбу з диспергуючим пристроєм простим кип’ятінням протягом 30 хв (автоклавування неприпустимо, так як воно викликає деформацію циліндра).

Перед забором проб повітря в колбу вносять 5-10 мл уловлює рідини (найчастіше м’ясопептонний бульйон) і встановлюють її під кутом 10°, що забезпечує природне стікання рідини після диспергування. Повітря, проходячи через колбу і пульверизатор, викликає утворення дрібних крапельок уловлює рідини, на яких осідають мікроорганізми. Прилад пов-1 застосовується для дослідження повітря закритих приміщень на загальну мікробну обсіменіння, для виявлення патогенних бактерій (наприклад, мікобактерій туберкульозу) і респіраторних вірусів в повітрі лікарняних палат.

Пробовідбірник «тайфун» р-40 (м) бактеріологічний призначений для визначення загального бактеріального обсіменіння повітря з подальшим виділенням різних патогенних і санітарно-показових мікроорганізмів.

Посів мікроорганізмів з навколишнього повітря здійснюється через калібрований отвір в оглядовому відсіку на чашку петрі з живильним середовищем, закріплену на обертовому столику приладу. Прокачування повітря здійснюється за допомогою вбудованого в пробовідбірник» тайфун » р-40 (м) бактеріологічного роторного пневмонасоса, кріплення на обертовому столику універсальне, що дозволяє використовувати чашки петрі різних модифікацій.

У бактеріологічному пробовідбірнику «тайфун» р — 40 (м) забезпечена герметичність внутрішньої камери і легкий доступ до досліджуваного середовища.

Швидкість обертання чашки плавно встановлюється за допомогою регулятора швидкості, розташованого на передній панелі пробовідбірника (рис.23)» тайфун » р-40 (м).

Пробовідбірник аерозольний бактеріологічний (паб-1). механізм дії паб — 1 заснований на принципі електростатичного осадження частинок аерозолю (а отже, і мікроорганізмів) з повітря при проходженні його через прилад, в якому ці частинки отримують електричний заряд і осідають на електродах з протилежним знаком. На електродах для уловлювання аерозолів поміщають в горизонтальному положенні металеві піддони з твердими середовищами в чашках петрі або рідким живильним середовищем (15-20 мл). Прилад переносний з великою продуктивністю 150-250 л/хв, тобто. За 1 год можна відібрати 5-6 м3 повітря. Його рекомендують застосовувати для дослідження великих обсягів повітря при виявленні умовно-патогенних і патогенних мікроорганізмів, наприклад, при виявленні в повітрі палат лікарень збудників внутрішньолікарняних інфекцій (pseudomonas aeruginosa. Staph, aureus та ін.), визначенні сальмонел і ешерихій в атмосферному повітрі в місцях дощування при зрошенні землеробських полів стічними водами.

Бактеріально-вірусний електропреципітатор (бвеп-1). прилад заснований на аспіраційно-іонізаційному принципі дії. Бвеп — 1 складається з осадительной камери, в яку вмонтовані електроди: негативний у вигляді привідної трубки, через яку надходить повітря (і частинки аерозолю відповідно заряджаються негативно), і позитивний, на якому осідають бактерії.

Прилад мб. цей прилад служить не тільки для визначення загальної мікробної обсіменіння, але і для відбору проб повітря з аерозольними частинками різних розмірів. Прилад мб побудований за принципом «сита» і являє собою циліндр, розділений на 6 горизонтальних смуг, на кожну з яких поміщають чашки петрі з мпа. Повітря просмоктується, починаючи з верхнього ступеня, в пластині якої отвори найбільші, і чим нижче ступінь, тим менше розміром отвору (через останні проходять тільки тонкодисперсні фракції повітряного аерозолю). Прилад розрахований на уловлювання частинок аерозолю розміром більше 1 мкм при швидкості відбору повітря 30 л/хв. Для уловлювання ще більш дрібних частинок аерозолю можна додавати додатково фільтр з фільтруючого матеріалу афа.

При використанні будь-якого з перерахованих приладів одержувані результати є приблизними, проте вони дають більш правильну оцінку обсіменіння повітря в порівнянні з седиментаційним методом. Оскільки і відбір і санітарно-мікробіологічні дослідження повітря не регламентовані гост, то можна використовувати будь-який прилад для оцінки бактеріальної забрудненості повітря. У багатьох випадках відбір проб суміщений з етапом посіву.

Для зниження чисельності мікроорганізмів в повітрі закритих приміщеньЗастосовують такі засоби: а) хімічні — обробка озоном, двоокисом азоту, розпорошення молочної кислоти, б) механічні — пропускання повітря через спеціальні фільтри, в) фізичні — ультрафіолетове опромінення.

Відправити свою хорошу роботу в базу знань просто. Використовуйте форму, розташовану нижче

Студенти, аспіранти, молоді вчені, які використовують базу знань у своєму навчанні та роботі, будуть вам дуже вдячні.

Розміщено на http://www.allbest.ru/

  • введення
  • 1. Мікрофлора повітря
  • 2. Методи очищення повітря
    • 2.1 схема отримання стерильного повітря
    • 2.2 механічні фільтри (фільтри попереднього очищення)
    • 2.3 компресор
    • 2.4 влагоотделитель
    • 2.5 охолоджувач
    • 2.6 вихровий сепаратор
    • 2.7 фільтри
  • 3. Мікробіологія повітря
  • 4. Мікробіологічні дослідження повітря
    • 4.1 методи забору проб матеріалу
  • висновок
  • список використаних джерел

Введення

В даний час даний напрямок дослідження дуже актуально.

Мікрофлора повітря ділиться на резидентну і тимчасову. Перша виявляється часто і повсюдно, друга — значно рідше, так як не володіє стійкістю щодо дії різних факторів. У складі резидентної мікрофлори, що формується за рахунок грунтових мікроорганізмів, — мікрококи, сарцини, бацили, актиноміцети, цвілеві гриби. Тимчасова мікрофлора повітря також може сформуватися з грунтових мікроорганізмів і з мікроорганізмів, що надходять в повітря з поверхні водойм. Контамінація повітря патогенними мікроорганізмами відбувається в основному крапельним шляхом за рахунок кашлю, чхання, розмови, завдяки чому утворюються зважені в повітрі аерозольні частинки. Розмір утворилися аерозольних частинок різний (від 10-100 до 2000 нм). Залежно від розміру крапель, їх електричного заряду, швидкості руху аерозольні частинки діляться на крапельну і пилову фази і крапельні ядерця.

Крапельна фаза. Являє собою дрібні краплі, які тривалий час зберігаються в повітрі і випаровуються до осідання.

Пилова фаза. Складається з великих, швидко осідають і випаровуються крапель, завдяки чому утворюється пил, що піднімається в повітря.

Крапельні ядерця. Це дрібні краплі (до 100 нм), які, висихаючи, залишаються в повітрі у зваженому стані і утворюють стійку аеродисперсионную систему, в якій частково зберігається волога, що підтримує життєздатність мікроорганізмів повітря.

Найбільшу небезпеку становлять мікроорганізми, укладені в дрібних аерозольних частинках (крапельних ядерцях), так як вони здатні глибоко проникати в дистальні відділи легенів — альвеоли. У той же час більші частинки аерозолю осідають в носовій порожнині і разом зі слизом виділяються в зовнішнє середовище.

Моніторинг атмосферного повітря включає контроль фізико-хімічних і біологічних властивостей повітря, що відображають ступінь його відповідності гігієнічним і екологічним нормативам. Моніторинг атмосферного повітря спрямований на отримання даних, що характеризують його екологічний і гігієнічний стан.

Екологічний норматив якості атмосферного повітря-критерій, що відображає гранично допустимий максимальний вміст забруднюючих речовин, при якому відсутній шкідливий вплив на навколишнє середовище.

Гігієнічний норматив якості атмосферного повітря-критерій, що відображає максимальний вміст несприятливих факторів, при якому відсутня шкідливий вплив на здоров’я людини.

Повітря виробничих приміщень може бути атмосферним (без попереднього очищення) і вентиляційним (через систему повітропідготовки).

Повітря виробничих приміщень-один з основних найбільш значних потенційних джерел забруднення лікарських засобів, тому його очищення є одним з ключових питань технологічної гігієни. Рівень чистоти повітря, що знаходиться в приміщеннях, визначається класом чистоти приміщення.

Стерилізацію повітря використовують:

Для створення повітряного середовища в приміщенні високого рівня чистоти,

Для подачі стерилізованих рідин (стерилізований, стиснутий, транспортний),

Для аерування при культивуванні мікроорганізмів і культур клітин в біотехнологічних виробництвах.

1. Мікрофлора повітря

Мікрофлора повітря залежить від мікрофлори грунту або води, над якими розташовані шари повітря. У грунті і воді мікроби можуть розмножуватися, в повітрі ж вони не розмножуються, а тільки деякий час зберігаються. Підняті в повітря пилом вони або осідають з краплями назад на поверхню землі, або гинуть в повітрі від нестачі харчування і від дії ультрафіолетових променів. Тому мікрофлора повітря менш багата, ніж мікрофлора води і грунту. Найбільша кількість мікробів містить повітря промислових міст. Повітря сільських місць набагато чистіше. Мікрофлора повітря відрізняється тим, що містить багато пігментованих, а також спороносних бактерій, як більш стійких до ультрафіолетових променів (сарцини, стафілококи, рожеві дріжджі, чудова паличка, сінна паличка та інші). Вельми багатий мікробами повітря в закритих приміщеннях, особливо в кінотеатрах, вокзалах, школах, в тваринницьких приміщеннях та інших.

Разом з нешкідливими сапрофітами в повітрі, особливо закритих приміщень, можуть перебувати і хвороботворні мікроби: туберкульозна паличка, стрептококи, стафілококи, збудники грипу, кашлюку і так далі. Грипом, кором, кашлюком заражаються виключно крапельно-повітряним шляхом. При кашлі, чханні викидаються в повітря найдрібніші крапельки-аерозолі, що містять збудників захворювань, які вдихають інші люди і, заразившись, хворіють. Мікробіологічний аналіз повітря на патогенну флору виробляють тільки за епідемічними показаннями.

У плановому порядку проби повітря для бактеріологічного дослідження беруться в операційних блоках, післяопераційних палатах, відділеннях реанімації, інтенсивної терапії та інших приміщеннях, що вимагають асептичних умов. За епідемічними показаннями бактеріологічному дослідженню піддають повітря ясель, дитячих садків, шкіл, заводів, кінотеатрів і так далі.

Виявлення в повітрі закритих приміщень гемолітичного стрептокока групи а і стафілокока, що володіє ознаками патогенності, є показником епідемічного неблагополуччя даного об’єкта.

2. Методи очищення повітря

Для очищення повітря застосовують різні методи: фізичні, хімічні та біологічні. Серед фізичних методів-абсорбція домішок на активованому вугіллі та інших поглиначах, абсорбція рідинами. Найбільш поширеними хімічними методами очищення повітря є озонування, прожарювання, каталітичне допалювання, хлорування. Біологічні методи очищення газоповітряних викидів почали застосовувати порівняно недавно і поки в обмежених масштабах.

2.1 схема отримання стерильного повітря

Для отримання стерильного повітря в промисловості застосовують багатоступеневу систему очищення повітря. Число ступенів і вибір матеріалу залежить від заданої кінцевої чистоти. Використовують волокнисті і пористі фільтруючі матеріали.

Застосовують:

1) фільтри грубої очистки (ефективність 40-60%)

2) фільтри середнього очищення (ефективність 60-90%)

3) високоефективні стерилізуючі фільтри (99, 997%)

2.2 механічні фільтри (фільтри попереднього очищення)

Це найпростіші фільтри, що застосовуються в очисниках повітря. Вони складаються зі звичайної дрібної сітки і використовуються в якості фільтрів попереднього очищення. Призначені для видалення великих пилових частинок, шерсті тварин. Такі фільтри встановлюються практично на всьому кліматичному обладнанні і захищають від пилу не тільки людей, але і нутрощі самих приладів.

Будучи попереднім фільтром, захищає наступні фільтруючі елементи (вугільні, hepa — фільтри) від передчасного зносу.

Більшість фільтрів попереднього очищення усувають частинки розміром 5-10 мікрон. Незважаючи на те, що процентне співвідношення частинок розміром від 5 мікрон по відношенню в загальній масі пилу знаходяться в повітрі мало, він грає дуже важливу роль, оскільки якщо в системі не використовується фільтр попереднього очищення, або він не досить ефективно видаляє частинки, це може привести до передчасного зносу активованого вугільного або hepa-фільтра.

Являють собою волокнисту структуру. У таких фільтрах пористі фільтруючі шари різної щільності утворюються з волокон, зазвичай пов’язаних склеюючими речовинами. У волокнистому рулонному повітряному фільтрі рулони фільтруючого матеріалу встановлюють на котушки у верхній частині фільтра і в міру запилення перемотують на нижні котушки. Використані матеріали викидаються; в окремих випадках можлива їх промивка або очищення пневматично, що робить попередні сітчасті фільтри багаторазовими.

2.3 компресор

У робочому циліндрі компресора (масляного) повітря зменшує свій обсяг приблизно в 10 разів і одночасно нагрівається. При високій температурі відбувається часткове випаровування масла зі стінок компресора, тому стиснене повітря насичується парами масла.

Гаряче стиснене повітря потрапляє в ресивер, де кілька охолоджується при контакті зі стінками. На жаль, за час перебування повітря в ресивері (зазвичай цей час не перевищує 30 секунд) у вигляді конденсату випадає лише незначна частина вологи, а інша у вигляді суспензії найдрібніших крапель води або водяного і масляного туману проходить далі в трубопровід. Перевищують пори фільтра. Часто застосовуються недорогі керамічні фільтри з великим діаметром пір 30-60 мкм, не здатні затримувати дрібні краплі конденсату. Температура ж повітря поки ще занадто висока, тому велика кількість вологи міститься у вигляді пари. Якщо швидкість повітря вище — 1 м/с, конденсат не встигає повністю стекти в нижню частину фільтра, великі краплі конденсату дробляться і несуться потоком повітря в пневмосистему. Відбувається «захлебывание» фільтра.

2.5 охолоджувач

Після вологовідділювача, встановленого безпосередньо за компресором, стоїть охолоджувач повітря, який найчастіше являє собою радіатор, який розрахований на максимальний тиск, створюваний компресором. Стиснене повітря тут примусово охолоджується до кімнатної (або нижче) температури, в зв’язку з чим значна частина вологи конденсується у вигляді туману і порівняно великих крапель. Як правило, виробником обмежується температура повітря на вході в охолоджувач на рівні (40 — 60)°с.

2.6 вихровий сепаратор

Після охолоджувача поставимо вихровий сепаратор масляно-водяного конденсату. Під дією відцентрової сили краплі конденсату відкидаються до стінки сепаратора, де відбувається їх злиття і укрупнення. Великі краплі під дією сили тяжіння стікають в нижню частину сепаратора, звідки видаляються за допомогою конденсатовідвідника.

Ефективність вихрового сепаратора дуже сильно залежить від швидкості потоку, тому вибір продуктивності сепаратора необхідно виробляти таким чином, щоб знизити ймовірність помилки до мінімуму.

З вихрового сепаратора стиснене повітря потрапляє в трубопровід. Оскільки температура на вулиці нижче, ніж в компресорній, при активному контакті зі стінками трубопроводу повітря охолоджується до кімнатної температури триває і процес утворення конденсату з найдрібніших частинок водяного і масляного туману.

Всі попередні заходи були спрямовані на те, щоб кількість цього конденсату було, по можливості, мінімальним.

З трубопроводу стиснене повітря « «збагачений» захопленими по шляху продуктами корозії трубопроводу і вже досить великими краплями конденсату, знову надходить у вихровий сепаратор.

2.7 фільтри

Залежно від розміру уловлюваних частинок фільтри ділять на:

· попередні, або фільтри грубої очистки-зупиняють частинки розміром понад 5-40 мкм, в залежності від обраного фільтропатрона;

· фільтри тонкого очищення-зупиняють частинки розміром більше 1 мкм, включаючи крапельну фракцію масла (0,1 мг / м);

· мікрофільтри — зупиняють частинки розміром більше 0,01 мкм, залишковий вміст масла не перевищує 0,01 мг/м;

· фільтри на основі активованого вугілля — зупиняють частинки розміром більше 0,003 мкм, вміст олії не більше 0,005 мг/м.

Фільтри обов’язково повинні бути оснащені манометрами або датчиком, реєструючим різниця тиску на вході і виході. За її величиною можна судити про ступінь забрудненості фільтра.

3. Мікробіологія повітря

Склад мікрофлори повітря дуже різний. У ньому виявлено до 100 різних видів сапрофітних мікроорганізмів: спори гнильних бактерій; спори цвілевих грибів, дріжджів, актиноміцет; з вегетативних форм мікробів пігментні і безпігментні коки і бактерії. Найбільш часто в повітрі зустрічаються такі види: вас. Subtilis, вас. Mesentericus, вас. Mycoides, p. Glaucum, mucor mucedo, т. Alba, т. Rosea, act. Griseus, micr. Roseus, micr. Candicans, staph. Citreus, staph. Albus та ін.

Кількісний і якісний склад мікрофлори атмосферного повітря залежить від характеру грунтового і водного покриву, загальносанітарного стану місцевості, сезонних, кліматичних і метеорологічних факторів (інтенсивність сонячної радіації, температура, атмосферні опади та ін.).

Найбільш чисте повітря в районі полюса, над лісовими масивами, морями, горами. Повітря над тайгою, морем містить лише одиниці мікробних клітин в 1 м3.

Повітря більш забруднене поблизу земної поверхні. Особливо забруднене повітря в містах в період інтенсивного вуличного руху: вміст мікроорганізмів досягає 4000—9800 особин в 1 м3; в парку, розташованому в околицях міста, всього 175—345 особин в 1 м3. Зелені деревні насадження затримують пил і містяться в ній мікробів.

Атмосферні опади при проходженні через повітряне середовище розчиняють і осаджують знаходяться в ній зважені частинки. Тому після дощу або снігопаду атмосфера в значній мірі очищається від бактерій.

Взимку завдяки наявності снігового покриву повітря містить менше мікроорганізмів, ніж влітку.

Кількість мікроорганізмів у повітрі приміщень для тварин залежить отсанитарно-гігієнічного стану приміщення, щільності розміщення тварин, активності руху і т. Д. В повітрі приміщень для великої рогатої худоби вміст мікроорганізмів досягає 12000—86000 в 1 м3, в свинарниках —25000— 67000, в пташниках —30000—120000 і більше особин на 1 м3 (а. П. Снігів, 1977).

У закритих приміщеннях накопичується мікрофлора, що виділяється людиною і тваринами: стрептококи, пневмококи, дифтероїди, стафілококи, тобто мешканці верхніх дихальних шляхів. Крім представників носоглоткової мікрофлори в повітрі приміщень іноді можна виявити мікобактерії туберкульозу, віруси.

4. Мікробіологічні дослідження повітря

Мікробіологічне дослідження повітря проводять з метою визначення загальної кількості мікроорганізмів (мікробного числа) і кількості санітарно-показових стрептококів (іноді і патогенних стафілококів). На підприємствах м’ясної та молочної промисловості в окремих виробничих приміщеннях досліджують повітря на вміст у ньому спор цвілевих грибів і дріжджів. Для цього використовують різні поживні середовища. Так, загальна кількість мікроорганізмів в повітрі визначають при посіві на мпа; санітарно-показових мікробів — на кров’яний агар, середовища гарро і туржецького; патогенних стафілококів-на желточно-сольовий або кров’яно-сольовий агар; спор плісеней і дріжджів-на сусло-агар або середу сабуро; протеолітичних бактерій-на мпж або молочний агар.

Повітря є середовищем, в якому мікроорганізми не здатні розмножуватися, що обумовлено відсутністю в повітрі поживних речовин, недоліком вологи, згубною дією сонячних променів. Життєздатність мікроорганізмів в повітрі забезпечується знаходженням їх в частинках води, слизу, пилу, шматочках грунту.

Мікрофлору повітря умовно поділяють на постійну, або резидентну (автохтонну), і транзиторну, або тимчасову (аллохтонну).

До представників резидентної (автохтонної) мікрофлори, яка в основному формується за рахунок мікроорганізмів ґрунту, належать пигментообразующие коки (м. Roseus, м. Flavus’ s. Flava, s. Alba), спороутворюючі бацили (в. Subtilis, в. Micoides, b. Mesentericus), актиномиценты (actinomyces spp.), гриби (penicillium spp.,aspergillus). Дріжджоподібні гриби роду candida.

Транзиторна (алохтонна) мікрофлора повітря формується переважно за рахунок мікроорганізмів грунту, а також за рахунок видів, що надходять з поверхні водойм і з організму людей і тварин. При цьому кожна людина або тварина при звичайному диханні, розмові, кашлі, виділяють так званий аерозоль, який являє собою колоїдну систему, що складається з повітря, крапельок рідини або частинок твердої речовини, що включають велику кількість мікроорганізмів.

Повітря не є сприятливим середовищем для розвитку аллохтонних мікроорганізмів, вони можуть зберігати в повітрі життєздатність лише тимчасово (одні види більш, інші менш тривало). Багато видів відмирають порівняно швидко під впливом висушування і сонячної радіації.

Можливо також потрапляння мікробів в повітря з слущивающимся епідермісом шкірних покривів, з пилом забрудненої постільної білизни і зараженої грунту.

Контамінація повітря закритих приміщень патогенними мікроорганізмами відбувається в основному повітряно-крапельним шляхом-при розмові, кашлі, чханні від хворих людей або носіїв збудників інфекційних хвороб, що вражають верхні дихальні шляхи.

Мікрофлора повітря змінюється в залежності від клімату, пори року, екологічного стану місцевості (наявність промислових підприємств, рівня розвитку промислового і сільськогосподарського виробництва, транспортної інфраструктури і т.д.). Велике значення для очищення повітря мають зелені насадження.

У складі мікрофлори повітря переважають різні види коків, спори бацил, грибів, дріжджі. Можуть зустрічатися патогенні і токсигенні мікроорганізми (стафілококи, стрептококи, туберкульозні палички і т.д.).

Їх кількість в повітрі робочих і житлових приміщень залежить від екологічного стану. Скупчення людей, погана вентиляція, недостатнє прибирання сприяють збільшенню кількості мікроорганізмів в повітрі.

Екологічна оцінка повітря приміщень здійснюється за двома показниками: загальній кількості мікроорганізмів і кількості санітарно-показових мікроорганізмів в 1 м3 повітря.

Санітарно-показовими мікроорганізмами служать гемолітичні стрептококи і стафілококи. Вони є постійними мешканцями верхніх дихальних шляхів, слизової носа і ротової порожнини людини. Орієнтовно повітря виробничих приміщень повинен містити від 100 до 500 бактерій в 1 м3. У житлових приміщеннях — до 1500 шт., і гемолітичних стрептококів-до 16 шт. В 1 м3. Забрудненим повітря житлових приміщень вважається при наявності (в 1 м3) 2500 всіх бактерій і 38 стрептококів. Повітря холодильних камер досліджується також на забрудненість пліснявами. Мікробне число (омч) (куо/м3);

Кількість золотистого стафілокока (staphylococcus aureus) (куо/м3);

Кількість цвілевих і дріжджових грибів (куо/дм3).

Повітряне середовище, як об’єкт санітарно-мікробіологічного дослідження має цілий ряд специфічних особливостей. Як правило, серед них в першу чергу виділяють: відсутність поживних речовин і, як наслідок, неможливість розмноження мікроорганізмів;

Короткочасне знаходження мікроорганізмів в повітряній фазі і їх мимовільна седиментація;

Невисокі концентрації мікроорганізмів в повітрі

Відносно невелике число видів мікроорганізмів, що виявляються в повітрі.

Мікроорганізми знаходяться в повітрі у формі аерозолю. Мікробний аерозоль-це суспензія в повітрі живих або вбитих мікробних клітин, адсорбованих на пилових частинках або укладених в «крапельні ядра». Він включає частинки розміром від 0,001 до 100 мкм (мкм — мікрометр). Розмір частинок визначає 2 важливих параметра аерозолю:

· швидкість осідання ( седиментації) — для частинок розміром від 10 до 100 мкм становить 0,03-0,3 м/сек. Частинки зазначеного розміру осідають на поверхні за 5-20 хвилин. Частинки з розміром 5 мкм і менш формують практично не седиментуючий аерозоль постійно зважених в повітрі частинок;

· проникаюча здатність частинок — найбільш небезпечні частинки з розміром від 0,05 до 5 мкм, так як вони затримуються в бронхіолах і альвеолах. Саме ця фракція пилових частинок береться до уваги в сучасній класифікації чистих приміщень згідно гост р 50766 — 95. Частинки з розміром від 10 мкм і більше затримуються у верхніх відділах дихальних шляхів і виводяться з них.

Небезпека мікробного аерозолю для здоров’я людей обумовлено не тільки існуванням аерозольного механізму передачі при ряді інфекційних захворювань. Мікробний аерозоль може також стати причиною розвитку алергії, а також інтоксикацій (отруєнь), пов’язаних з інгаляцією ендотоксинів грамнегативних бактерій, грампозитивних бактерій і мікотоксинів цвілевих грибів. Крім того, присутність в повітрі мікробних аерозолів небажано при здійсненні ряду технологічних процесів.

4.1 методи забору проб матеріалу

Мікробіологічне дослідження повітря

Санітарно-мікробіологічне дослідження повітря включає 4 етапи:

Відбір проб повітря;

Обробку, транспортування і зберігання проб;

Виділення мікроорганізмів з досліджуваної проби;

Ідентифікацію виділених культур мікроорганізмів;

Один з найбільш відповідальних моментів, оскільки лежить в основі всього проведеного в подальшому дослідженні.

Атмосферне повітря досліджують в житловій зоні на рівні 0,5 — 2,0 м від землі поблизу джерел забруднення, а також в зелених зонах (парки, сади) — для оцінки їх впливу на мікрофлору повітря.

У закритих приміщеннях відбір проб проводять в 5-ти різних місцях обстежуваного приміщення (по типу «конверта»): 4 точки відбору по кутах приміщення (на відстані 0,5 м від стін), а 5-я точка відбору-в центрі приміщення. Проби повітря забирають на висоті 1,6-1,8 м від підлоги-на рівні дихання в житлових приміщеннях і на рівні ліжок-в умовах лікарняних палат. Проби повітря необхідно відбирати вдень в період активної діяльності людини, після вологого прибирання і провітрювання приміщення.

При відборі проб повітря для виділення мікроорганізмів використовуються седиментаційний і аспіраційний методи.

Аспіраційний метод пов’язаний з осадженням мікробних частинок з повітря на будь-яку поверхню.

Мікробну обсіменіння повітря (омч) визначають за правилом (формулою) в.л. Омелянського: на 100,0 см2 поверхні живильного середовища за 5 хвилин осідає стільки мікроорганізмів, скільки їх міститься в 10,0 л повітря (10,0 дм3).

Після відповідного перерахунку омч виражають в дещо бактерій на певний обсяг досліджуваного повітря, оскільки вважають, що кожна колонія-потомство життєздатного мікроорганізму.

Седиментаційний метод заснований на тому, що відбувається під дією сили тяжіння осадженні мікроорганізмів на поверхню відповідної щільної живильного середовища.

Чашку з живильним середовищем (відкриту) ставлять на горизонтальну поверхню на висоті робочого столу і залишають на певний час.

Потім чашку закривають і інкубують 18-24 години, після чого підраховують кількість виросли колоній.

Аспіраційний метод заснований на примусовому осадженні мікроорганізмів на поверхню відповідної щільної живильного середовища.

При здійсненні цього методу можливе використання:

1. Пробовідбірника бактеріологічного аерозолю, принцип дії якого заснований на електризації частинок досліджуваного повітря і подальшому осадженні їх на електроді протилежного знака.

2. Апарату кротова, принцип дії якого заснований на чисто механічної аспірації повітря через щілину в кришці приладу. Розташованої над обертається поверхнею живильного середовища в чашці петрі, внаслідок чого відбувається інерційне осадження бактерій з повітря на поверхню живильного середовища.

Екологічне дослідження мікробної обсіменіння об’єктів навколишнього середовища

Еколого-бактеріологічне дослідження мікробної обсіменіння предметів зовнішнього середовища передбачає виявлення стафілокока, синьогнійної палички, бактерій групи кишкових паличок і аеромонад (строго за показаннями). Забір проб з поверхонь різних об’єктів здійснюють методом змивів.

Взяття змивів виробляють стерильним ватним тампоном на паличках, вмонтованих в пробірки, або марлевими серветками, розміром 5ч5 см, простерилізованими в паперових пакетах або в чашках петрі. Для зволоження тампонів в пробірки з тампонами наливають по 2,0 мл стерильного фізіологічного розчину. Серветку захоплюють стерильним пінцетом, зволожують фізіологічним розчином з пробірки, після протирання досліджуваний об’єкт поміщають в ту ж пробірку.

При контролі дрібних предметів змиви забирають з поверхні всього предмета. При контролі предметів з великою поверхнею змиви проводять в декількох місцях досліджуваного предмета площею приблизно в 100,0-200,0 см 2 .

Висновок

Мікробіологічні дослідження повітря показали, що присутність кімнатних рослин значно знижує чисельність бактерій (серед яких можуть бути умовно-патогенні) і спор цвілевих грибів, тоді як окремо взяте провітрювання не змінює якісного складу мікрофлори і не так сильно знижує загальну чисельність мікроорганізмів. Отже, очищення повітря в приміщеннях більш ефективно за допомогою кімнатних рослин, ніж провітрюванням приміщень протягом 10 хвилин.

Санітарно-бактеріологічне дослідження повітря має велике значення в хірургічних відділеннях лікарень, пологових будинках, де є небезпека виникнення внутрішньолікарняної інфекції. Виявлення staph, aureus в цих відділеннях є неприпустимим. Наростання кількості staph, aureus певних фаготипів слід розглядати як грізний провісник можливої появи госпітальної інфекції.

Виявлення вірусів і патогенних бактерій з повітря закритих приміщень проводять за епідеміологічними показаннями при оцінці ефективності знезараження повітря, при контролі санітарно-мікробіологічного змісту лікарняних установ і т.д.

Для виявлення мікобактерій туберкульозу відбір проб виробляють за допомогою приладу пов-і, в якому вловлює використовують середовище школьниковой.

Еталоном чистоти атмосферного повітря вважають показник бактеріальної обсіменіння в зеленій зоні (зелена зона вднг-350 мікробів в 1 м 3). Приклад значного обсіменіння повітря-місця скупчення людей і транспорту. Повітря операційних до початку операції повинен містити не більше 500, а після неї-не більше 1000 мікробів в 1 м3. Staph, aureus не повинні виявлятися при дослідженні 250 л повітря. У передопераційних і перев’язувальних до початку роботи кількість мікробів в 1 м3 не повинно перевищувати 750. У лікарняних палатах влітку число мікробів має бути менше 3500, а взимку-менше 5000 в 1 м3. Тут допускають наявність стафілококів в повітрі: влітку-24, взимку-52 при дослідженні 250 л повітря.

Список використаних джерел

1. Гусєв м. В. Мікробіологія. Третє видання/ м.в. Гусєв, л. А. Мінєєва. -м.: рыбари,2004. — 464 с.

2. Єлінов н. П. Основи промислової біотехнології./ н. П.єлінов — м. — «колос-хімія», 2004.-296 с.

3. Калунянц к.а. Обладнання мікробіологічних виробництв/ к. А. Калунянц [та ін.].- м. — «агропромиздат», 1987.-397 с.

4. Лабінська а. С. Мікробіологія з технікою мікробіологічних досліджень./ лабінська а. С.,- м., медицина, 1978.-394 с.

Розміщено на allbest.ru

Подібні документи

    Особливості мікрофлори повітря і грунту, шкіри і респіраторного тракту. Санітарна оцінка повітря. Епіфітні мікроорганізми рослин. Визначення мікробного числа. Аспіраційний метод (за допомогою апарату кротова). Седиментаційний (чашковий) метод коха.

    Презентація, доданий 03.06.2014

    Гігієнічна характеристика фізичних факторів повітряного середовища. Фізичні властивості атмосферного повітря. Метеорологічні фактори. Іонізація повітря і атмосферна електрика. Вивчення принципів гігієнічного нормування мікроклімату приміщень.

    Презентація, доданий 05.12.2013
    Рослинної сировини. Роль мікроорганізмів в кругообігу речовин в природі. Вплив факторів навколишнього середовища на мікроорганізми. Цілі і завдання санітарної мікробіології.

    Реферат , добавлен 12.06.2011

    Найбільш ймовірні мікрокліматичні умови проведення спелеологічних досліджень по ф. Тромбу. Умови перебування під землею. Температура повітря, атмосферний тиск і відносна вологість повітря в печерах, аналіз їх цілющого впливу.

    Реферат , добавлен 07.12.2012

    Санітарно-показові мікроорганізми для грунту. Вимоги, що пред’являються до водопровідної води. Мікрофлора порожнини рота дорослого. Санітарно-гігієнічний стан повітря. Мікроорганізми промежини. Хімічні фактори, що діють на бактерії.

    Тест , доданий 17.03.2017

    Санітарно-бактеріологічне дослідження повітря шкільних приміщень. Основні методи і техніка посіву матеріалів і культур мікробів. Методи дослідження повітря в закритих приміщеннях. Кількість мікроорганізмів, що міститься в повітрі коридору і класу.

    Наукова робота , доданий 22.11.2009

    Викиди забруднюючих речовин і стан атмосферного повітря. Результати державного контролю за станом атмосферного повітря. Стан виконання заходів з охорони атмосферного повітря на підприємствах. Кислотні дощі. Охорона.

    Реферат , доданий 13.11.2002

    Географічні особливості арктики. Властивості та умови проживання облігатних психрофілів, вивчення спільнот палеоорганізмів вічної мерзлоти. Чисельність життєздатної мікрофлори в мерзлих породах, її дослідження методом накопичувального культивування.

    Реферат , добавлен 29.03.2012

    Визначення та аналіз головних особливостей і сутності епіфітної мікрофлори-мікроорганізмів, що мешкають на поверхні надземних частин рослин і в зоні їх ризосфери. Ознайомлення з характерними рисами, притаманними представникам епіфітної мікрофлори.

Сторінка 87 з 91

Кількісний і особливо якісний склад мікрофлори повітря є санітарним показником ступеня забруднення повітряного середовища.
Для оцінки ступеня чистоти повітря а. І. Шафір запропонував наступні критерії. У житлових невентильованих приміщеннях в літній час повітря може вважатися чистим за умови, якщо загальна кількість мікроорганізмів в 1 м3 повітря буде менше 1500, а зеленящего і гемолітичного стрептокока менше 16, а забрудненим, якщо містить більше 2500 мікроорганізмів і більше 36 стрептококів. Взимку, природно, кількість мікроорганізмів в приміщеннях значно збільшується. За даними. А. І. Шафіра, для чистого повітря загальна кількість мікробів буде менше 4500, а стрептококів менше 36 в 1 м3, для забрудненого — загальна кількість мікробів більше 7000, а стрептококів більше 124.
Для визначення ступеня чистоти повітря застосовуються такі мікробіологічні методи дослідження.

  1. метод, заснований на принципі ударної дії повітряного струменя.
  2. седиментационный метод.

При будь-якому мікробіологічному методі дослідження повітря враховується як загальна кількість мікроорганізмів в певному обсязі повітря, так і їх якісний склад. Окремо враховується аеробна і анаеробна мікрофлора.
Для виявлення аеробних сапрофітів в повітрі посів проводиться на м’ясо-пептонний агар, а при дослідженні на наявність стрепто — і стафілококів повітря засівають на спеціальні середовища (цукровий агар, кров’яний агар). Для виділення і підрахунку стафило — і стрептококів застосовують також м’ясо-пептонний агар з додаванням 3% дефібрінірованной баранячої крові, 0,25% глюкози і генціанвіолета 1: 50 000-1: 500 000.
Для дослідження на наявність анаеробних мікробів повітря засівають на залізосульфітну середу (середовище вільсон-блера). Це середовище готують наступним чином. До 100 мл розплавленого, а потім охолодженого до 80° лужного м’ясо-пептонного агару додають 1% стерильної глюкози, 10 мл 20% сірчанокислого натрію і 1 мл 8% розчину хлорного заліза. Розчин хлорного заліза готується на стерильній дистильованій воді. Розчин сірчанокислого натрію стерилізується 1 годину текучою парою.
Метод дослідження повітря за принципом ударного струменя. Запропоновано ряд апаратів для дослідження повітря методом ударного струменя. Апарат, сконструйований радянським вченим ю. А. Кротовим, має перевагу перед іншими (рис. 124, 125).
Апарат кротова змонтований в одному ящику і складається з трьох частин: 1) вузла для відбору проб повітря; 2) мікроманометра; 3) живильного механізму, розміщеного в дерев’яному футлярі (електричної частини).

Прилад можна підключити як на 127 v, так і на 220 v, і за допомогою спеціального перемикача і реостата регулювати швидкість проходить через прилад струменя повітря. За допомогою апарату кротова протягом 1 хвилини можна пропустити від 25 до 50 л повітря. Механізм дії апарату кротова полягає в наступному. Досліджуване повітря за допомогою відцентрового вентилятора, що обертається зі швидкістю 4000 — 5000 оборотів в хвилину, енергійно, засмоктується через щілину кришки приладу і вдаряється об поверхню відкритої чашки гейденрейха, залитої живильним агаром і встановленої на диску малої крильчатки. Вміщені в повітрі мікроорганізми осідають на живильному агарі чашки гейденрейха.

Рис. 124. Прилад кротова для мікробіологічного дослідження повітря (загальний вигляд).

Рис: 125. Прилад кротова для мікробіологічного дослідження повітря (схема).
1-циліндричний корпус; 2 — підстава корпусу; 3 — електромотор; 4 — відцентровий вентилятор; 5 — восьмілопастная крильчатка; 6 — диск; 7 — пружини; 8 — чашка гейденрейха; 9 — кришки; 10 — накидні замки; 11 — диск з плексигласу; 12 — клиноподібна щілина; 13 — розрізне кільце; 14 — штуцер з діафрагмою; 15-вивідна трубка.

Для рівномірного розподілу мікроорганізмів по всій поверхні чашки столик з чашкою повинен обертатися не дуже швидко (60 оборотів в хвилину). З приладу повітря виводиться через повітропровідну трубку, яка з’єднана з мікроманометром, що показує швидкість пропускання повітря через прилад. Експозиція чашки 10 хвилин, після чого мотор зупиняють. Знімають кришку приладу. Дістають чашку з посівом повітря і закривають її кришкою. Далі чинять так. При визначенні аеробної флори чашку гейденрейха з посівом ставлять на 24 години в термостат при температурі 37°, а потім залишають на 24 години при кімнатній температурі і проводять підрахунок всіх виросли колоній на поверхні агару. Потім чашку залишають ще на 24 години при кімнатній температурі, після чого (через 72 години з моменту посіву) проводять диференційований підрахунок, тобто враховують окремо пігментні форми, спороносні форми і цвілеві гриби.
Для визначення кількості анаеробних мікроорганізмів чашку з посівом, вийняту з приладу кротова, для створення анаеробних умов росту мікробів додатково заливають 10-15 мл м’ясо-пептонного агару і ставлять в термостат при температурі 37° на 24 години.
На сульфітному агарі, яким залита чашка до посіву, анаеробні мікроби дадуть зростання у вигляді почорнілих колоній, за кількістю яких можна судити про ступінь забруднення повітря анаеробними мікробами.
Бактеріальне забруднення повітря виражається загальним числом мікробів в 1 м3 його.
Приклад. Через апарат кротова пропущено за 10 хвилин 125 л повітря, на поверхні середовища виросло 100 колоній.
Число мікробів в 1 м3 повітря
Седиментаційний метод дослідження повітря (чашковий метод). Седиментаційний метод є найбільш простим методом для вивчення мікрофлори повітря, хоча не володіє великою точністю.
Якщо застосовувати чашки одного діаметра при одному терміні експозиції, то цей метод може бути використаний для отримання порівняльних даних по бактеріальному забрудненню повітря. Техніка цього методу полягає в наступному. Чашки гейденрейха-петрі з застиглим агаром виставляють у відкритому вигляді на різних висотах в приміщенні на різні терміни (від 15 хвилин
До 1.5 годин). Потім чашки закривають і ставлять в термостат. Інкубацію посівів виробляють за методикою, описаної вище.
Для перерахунку кількості мікробів на 1 м3 користуються формулою в.л. Омелянського, який вважав, що протягом 10-хвилинної експозиції на поверхню щільної живильного середовища 100 см2 осідає стільки мікробів, скільки їх знаходиться в 10 л повітря. Їм була складена відповідна таблиця розрахунку, користуючись якою можна вирахувати загальну кількість мікроорганізмів в 1 м3 повітря. У цій таблиці дані постійні множники, на які треба помножити отримані кількості колоній в залежності від діаметра і площі чашки, де проводиться посів. Наводимо схему постійних множників для розрахунку кількості мікробів по омелянському (табл. 34).
Таблиця 34
Розрахунок числа мікробів в 1 м3 повітря (по омелянському)

Має діаметр частинок 0,1 мм і менше. Частинки знаходяться в повітрі тривалий час і розсіюються на великі відстані з потоками повітря, разом з якими поширюються різні мікроорганізми, в тому числі і хвороботворні.

3. Фаза бактеріального пилу має частинки різного діаметру від 1 до 0,01 мм.ця фаза має найбільше епізоотологічне та епідеміологічне значення, так як вона глибоко проникає в дихальні шляхи. Аерогенним способом інфекційні захворювання передаються в основному в закритих приміщеннях.

Виживаність патогенних мікроорганізмів, що знаходяться у зваженому стані, залежить від біологічних властивостей збудника, а також температури і вологості повітря. Наприклад, збудники туберкульозу, сибірської виразки, добре переносять висихання, тривалий час зберігаються в навколишньому середовищі.

Мікробіологічне дослідження повітря проводять для визначення кількості мафанм, тобто загального мікробного числа і кількості санітарно_показательних мікроорганізмів. Кількість мафанм в повітрі визначають посівом на поверхню мпа; кількість санітарно-показових мікробів визначають посівом на кров’яний агар, желточно-сольовий агар. Для визначення наявності спор плісеней і дріжджів використовують сусло або середовище сабуро, чапека. Існує багато методів бактеріологічного дослідження повітря, найдоступнішими є методи коха і кротова.

Седиментационный метод коха (лат. Sedimentum-осад). Суть методу полягає в осадженні мікробних частинок і крапель аерозолю на поверхню щільного живильного середовища під дією сили тяжіння.

Методика. Чашки петрі з мпа, середовищем сабуро залишають відкритими на 5-20 хв в досліджуваному приміщенні (класі, в цехах молокозаводу, м’ясокомбінату і т.д.). Потім чашки закривають і поміщають в термостат при температурі +30_с, якщо це мпа або кров’яний агар, після чого культивують протягом 48 год; якщо це середовище сабуро — культивують при температурі +25_с протягом 4-7 діб. Потім проводять підрахунок виросли колоній у всій чашці.

Методи мікробіологічного дослідження дозволяють виявити велику кількість мікроорганізмів. Але, незважаючи на посіву вважається найбільш поширеним в практиці. Суть його полягає у висіві обсягу препарату (грунтової суспензії) в чашці петрі на щільне середовище.

Цей метод мікробіологічного дослідження дозволяє враховувати не тільки кількість, але і груповий, а в ряді випадків і видовий склад мікроскопічної флори. Підрахунок числа колоній проводиться, як правило, з дна чашки петрі в проходить світлі. На підрахованому ділянці ставиться точка маркером або чорнилом.

Аналіз води

Мікрофлора водного об’єкта, як правило, відображає мікробний склад грунту біля нього. У зв’язку з цим методи санітарно-мікробіологічного дослідження води і грунту мають особливе практичне значення при вивченні стану конкретної екосистеми. У прісних водоймах містяться, як правило, коки, паличкоподібні бактерії.

Анаероби у воді виявляються в малій кількості. Як правило, вони розмножуються на дні водойм, в мулі, беручи участь в процесах очищення. Мікрофлора океанів і морів представлена переважно солелюбівимі (галофільними) бактеріями.

У воді артезіанських свердловин мікроорганізмів практично немає. Це обумовлюється фільтрує здатністю грунтового шару.

Загальноприйнятими методами мікробіологічного дослідження води вважаються визначення мікробного числа і колі-титру або колі-індексу. Перший показник характеризує кількість бактерій в 1 мл рідини. Коли-індекс являє собою кількість кишкових паличок, присутніх в літрі води, а коли-титр — мінімальна кількість або максимальне розведення рідини, в якому їх ще можна виявити.

Визначення мікробного числа

Цей метод санітарно мікробіологічного дослідження води полягає в наступному. В 1 мл води визначають кількість факультативних анаеробів і мезофільних (проміжних) аеробів, здатних на мясопептонном агарі (основний живильному середовищі) при 37 град. Протягом доби формувати колонії, видимі при збільшенні в 2-5 р. Або неозброєним оком.

Ключовою стадією розглянутого методу мікробіологічного дослідження води є посів. З кожної проби робиться посів не менше 2-х різних обсягів. При в кожну чашку вносять по 1-0.1 мл чистої рідини і по 0.01-0.001 мл забрудненої. Для посіву 0.1 мл або меншого об’єму рідина розлучається дистильованою (стерильною) водою. Послідовно готують десятикратні розведення. По 1 мл від кожного з них вносять в дві чашки петрі.

Розведення заливаються живильним агаром. Його необхідно попередньо розтопити і остудити до 45 град. Після активного перемішування середу залишають на горизонтальній поверхні для застигання. При 37 град. Посіви вирощують протягом доби. Розглянутий метод мікробіологічного дослідження води дозволяє враховувати результати на тих чашках, де кількість колоній знаходиться в межах від 30 до 300.

Повітря

Він вважається транзитним середовищем для мікроорганізмів. Основними методами мікробіологічного дослідження повітря є седиментація (осідання) і аспірація.

Мікрофлора повітряного середовища умовно поділяється на змінну і постійну. До першої відносяться дріжджі, пигментообразующие коки, спороносні бацили, палички та інші мікроорганізми, стійкі до висихання, впливу світла. Представники змінної мікрофлори, проникаючи в повітря зі звичної для них середовища проживання, недовго зберігають свою життєздатність.

У повітрі великих мегаполісів мікроорганізмів набагато більше, ніж у повітряному середовищі сільської місцевості. Над морями, лісами бактерій дуже мало. Очищенню повітря сприяють опади: сніг і дощ. У закритих приміщеннях мікробів набагато більше, ніж на відкритих просторах. Їх кількість підвищується в зимовий період при відсутності регулярного провітрювання.

Санітарне дослідження повітря. Санітарно-бактеріологічне дослідження повітря

Седиментація

Цей метод мікробіологічного дослідження в мікробіології вважається найпростішим. Він грунтується на осіданні крапель і частинок на поверхні агару у відкритій чашці петрі під дією сили тяжіння. Метод седиментації не дозволяє точно визначити число бактерій в повітрі. Справа в тому, що на відкритій чашці вловити дрібні фракції пилових частинок і бактеріальних крапель досить складно. На поверхні затримуються переважно великі частинки.

Цей метод не використовується при аналізі атмосферного повітря. Цьому середовищі властиві великі коливання швидкості руху повітряних потоків. Седиментація, однак, може використовуватися при відсутності більш досконалих приладів або джерела електроенергії.

Визначення мікробного числа здійснюється за методом омелянського. Відповідно до нього, за 5 хвилин на поверхні агару площею 100 кв. См осідає таке число бактерій, яке присутнє в 10 л повітря.

Наказ 535 «про уніфікацію мікробіологічних методів дослідження»

Варто сказати, що мікробіологічне обстеження в даному випадку взагалі супроводжується певними проблемами. Вони пов’язані з тим, що в нижніх відділах статевого тракту в нормі присутня різноманітна мікрофлора, що змінюється в різні вікові періоди. Для підвищення ефективності дослідження і були розроблені уніфіковані правила.

Діагностика вірусних інфекцій

Вона здійснюється методами виявлення рнк і днк-збудників. Вони базуються переважно на визначенні нуклеотидних послідовностей в патологічному матеріалі. Для цього використовуються молекулярні зонди. Вони являють собою штучно отримані нуклеїнові кислоти, комплементарні (доповнюють) вірусним кислотам, мічені радіоактивною міткою або біотином.

Особливість методу полягає в багаторазовому копіюванні конкретного фрагмента днк, що включає в себе кілька сотень (або десятків) нуклеотидних пар. Механізм реплікації (копіювання) полягає в тому, що добудовування може початися виключно в певних блоках. Для їх створення використовуються праймери (затравки). Вони являють собою синтезовані олігонуклеотиди.

Плр-діагностика (полімеразна ланцюгова реакція) проста у виконанні. Цей метод дозволяє швидко отримати результат при використанні невеликого обсягу патологічного матеріалу. За допомогою плр-діагностики виявляються гострі, хронічні і латентні (приховані) інфекції.

При чутливості цей метод вважається кращим. Однак в даний час тест-системи недостатньо надійні, тому плр-діагностика не може повністю замінити традиційні методики.